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           法测试盒(WST-1 法)(武汉伊莱瑞特生物科技有限                          模型不纳入本次实验研究。
           公司,E-BC-K020);丙二醛比色法测试盒(TBA 法)                      1.5 干预方法
                                                                                                      [14]
           (武汉伊莱瑞特生物科技有限公司,E-BC-K025-M)。                       1.5.1 电针组 腧穴定位:参考《实验针灸学》                   和《实
           1.3 动物模型制备                                          验动物常用穴位名称与定位第2部分:大鼠》                    [15] 并模
           1.3.1 MCAO 模型   [12]  (1)术前准备:适应性饲养                 拟人体腧穴骨度分寸法定位取穴:神庭穴位于大鼠头前
           大鼠至目标体质量(270~280 g),术前将造模动物禁                        正中线,额顶骨缝交界线前方;百会穴位于大鼠头部前
           食 12 h、自由饮水。准备好分离动脉所需的物品,造模                         正中线,双耳尖连线中点。
           由 2 名经培训的手法基本一致的实验人员同时进行,以                              电针方法:术后第 1 天开始电针治疗,选用直径
           避免因造模不同引起的误差。(2)麻醉:大鼠抓取尾部,                          0.3 mm 的环球无菌针灸针分别刺入神庭穴(向上斜刺,
           将其放在电子秤上称量体质量,称重后按照 3.5 ml/kg                       深度约 2 mm)、百会穴(向前斜刺,深度约 2 mm),
           的剂量用 10% 的水合氯醛进行腹腔注射麻醉,检查大                          进针后连接 SDZ- Ⅱ型华佗电子针疗仪,疏密波频率为
           鼠角膜反射,消失为麻醉成功的标志。麻醉时注意进针                            1 Hz/20 Hz,强度以针体轻轻抖动、动物耐受为度,1次/d,
           的深度和角度,避免造成动物意外死亡。(3)分离动                            30 min/ 次,连续治疗 2 周,直至动物被处死。针刺干
           脉:麻醉成功后用剃毛器将 SD 大鼠颈前部的皮毛剃去,                         预由同一人员进行操作。
           将其仰卧位固定在大鼠固定板上,用碘伏、医用乙醇消                            1.5.2 模型组和假手术组 术后于笼中饲养,除同等条
           毒后备皮,在颈中线稍偏左侧做 1 个 4 cm 左右的切口,                      件抓取固定 30 min 外,不给予任何干预措施。
           钝性逐层分离皮下组织,找到并将颈总动脉与迷走神经                            1.6 检测指标与方法
           分离,并在颈总动脉近心端处预留结扎线。沿颈总动                             1.6.1 Morris 水迷宫实验 Morris 水迷宫实验设置参照
           脉向远心端找到颈内动脉与颈外动脉的分叉并将两者分                            设备说明书和参考文献[16]设置,主要包括定位航行
           离。在颈外动脉远心端处预留结扎线,在颈外动脉近心                            和空间探索两部分实验。
           端、颈总动脉近心端处结扎颈外动脉与颈总动脉。(4)                               定位航行实验:在动物每天电针治疗结束后,分上、
           插栓:用动脉夹夹闭颈内动脉远心端,左手持弯镊将颈                            下午 2 个时段训练,每次训练将动物面朝池壁从 4 个不
           总动脉结扎处与分叉处撑起,右手用显微剪刀在距离颈                            同的象限依次放入水迷宫中,记录从不同象限将动物放
           内与颈外动脉分叉 1 cm 处剪 V 型切口,将线栓从颈总                       入后,动物找到逃生平台的时间(即逃避潜伏期);动
           动脉切口处经分叉插入 18~20 mm,稍感有阻力时即可                        物如果在 90 s 内找到逃生平台,并在其上停留 3 s 以上,
           停止插栓,用 3-0 的缝合线结扎 V 型切口处并记录下                        则认为动物找到逃生平台;如果动物在 90 s 内未找到逃
           插栓时间,消毒后将皮肤切口缝合。切记留 1 cm 线栓                         生平台,则由实验者借助外物对动物进行引导,找到逃
           在皮肤外。(5)再灌注:线栓插入 2 h 后,小心将线                         生平台并熟悉 10 s,此时动物的逃避潜伏期界定为 90 s。
           栓退至分叉处,以实现缺血再灌注。在手术期间及术后,                           此部分实验时间从电针治疗第 9 天开始,第 13 天结束,
           室温保持在 25 ℃左右,同时采用电热毯维持大鼠肛温                          持续 5 d。
           在(37±1)℃,直至大鼠麻醉苏醒,恢复意识。                                 空间探索实验:本实验于第 14 天电针治疗结束后
           1.3.2 假手术组模型制备 大鼠仅做颈部皮肤切开,分                         进行。撤掉池壁内的逃生平台,将大鼠按照相同的操作
           离颈总动脉、颈内动脉与颈外动脉,然后消毒切口、缝                            从离原平台位置最远象限投入池内,并记录动物在 90 s
           合皮肤。                                                内穿越逃生平台的次数。
           1.3.3 造模后处理 术后麻醉恢复时要注意保暖,保持                         1.6.2 脑组织超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,
           呼吸道通畅。术后 3 组大鼠均腹腔注射硫酸庆大霉素 2                         SOD)活性和丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量检
           U/ 只,连续注射 3 d,以预防感染。术后均腹腔注射呋                        测 组织样本采集:Morris 水迷宫行为学测试结束后,
           塞米注射液,剂量为 0.1 mg/kg,防止脑水肿。                          抓取各组大鼠称重后采用 10% 的水合氯醛以 4 ml/kg 的
           1.4 模型制备成功的标准 动物麻醉完全清醒后,按                           剂量进行腹腔注射麻醉,麻醉成功后迅速断头取脑,用
           照 Zea-Longa 法 [13] (0 分:无神经缺损症状,1 分:无               LEICA 手术刀片于冰上准确分离出梗死侧脑皮质,将其
           法完全伸展对侧前爪,2 分:向右侧转圈,3 分:向对                          放入预先配置的 4 ℃ PBS 溶液中漂洗血液,漂洗结束
           侧倾倒,4 分:意识丧失,无法自发行走)对 MCAO 模                        用滤纸吸干并适量等分称重,以重量与体积为 1∶9 的
           型大鼠进行评分,筛选分值为 1~3 分的大鼠为成功的动                         比例加入 4 ℃的 PBS 进行研磨。
           物模型,纳入模型组、电针组。0 分和 4 分失败的动物                             WST-1 法检测:研磨结束后,将各组样本置于冷
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